Citología, tricograma, raspados, cultivos, etc. Seguro que has oído hablar de todas estas técnicas en dermatología. Pero, ¿sabes cómo tomar la muestra para llevarlas a cabo correctamente?
Los problemas dermatológicos cursan con una importante variedad de lesiones. En la primera consulta, tras una anamnesis extensa, se debería realizar una toma de muestras básica de las lesiones cutáneas. El correcto análisis e interpretación de las muestras recogidas depende en gran parte de la técnica utilizada para tomarlas. Este artículo pretende tratar las diferentes técnicas usadas para la obtención de muestras en una primera consulta de dermatología, que variarán en función del tipo y localización de la lesión, así como de la sospecha clínica.
Citología
La citología está indicada en cualquier problema de piel, pero especialmente en el caso de las enfermedades descamativas, alopécicas y en aquéllas que cursen con prurito. En general, esta técnica debería realizarse de forma rutinaria, ya que permite observar la presencia de bacterias, hongos, levaduras y diagnosticar infecciones bacterianas y/o fúngicas. Según la zona y el tipo de lesión, se utilizará una modalidad diferente.
Técnica del celo
Figura 1. Preparación del celo para su observación
al microcopio.
Indicada cuando la superficie cutánea es lisa y poco grasa, se utiliza para evaluar la presencia de la levadura Malassezia. También resulta de utilidad para identificar las células inflamatorias como neutrófilos, células epiteliales nucleadas (si se sospecha de trastornos de queratinización), presencia de bacterias y parásitos que residen en la superficie (como Cheyletiella).
Se debe colocar un trozo de celo sobre la superficie a analizar. Tras presionar ligeramente, se despega de la piel de forma rápida y se tiñe mediante cualquier técnica estándar tipo Diff Quick sin pasar por la primera solución (alcohólica). El celo teñido se coloca en un portaobjetos para analizarlo al microscopio (figura 1).
Figura 2. Citología por impronta sobre una lesión en la extremidad posterior.
Impresión directa con portaobjetos
Es útil cuando la piel es grasa, húmeda o si se observa supuración. Se realiza directamente colocando el portaobjetos sobre la superficie a analizar, y presionando para que el material cutáneo se adhiera. Después se deja secar al aire, y se tiñe (figura 2).
Técnica con escobillón
En los oídos, espacios interdigitales y pliegues cutáneos, se recomienda usar un escobillón para recoger el material de la superficie de la piel. Si la superficie está muy seca, se debe humedecer el escobillón con solución salina estéril. Una vez recogida la muestra, se extenderá sobre el portaobjetos de forma homogénea y se dejará secar para teñirla posteriormente (figuras 3 y 4).
Figura 3. Introducción de un hisopo en el oído para la recogida de muestras.
- Material necesario para la citología
- Cada una de las distintas técnicas utilizadas para tomar muestras en dermatología requiere de un material determinado. En el caso de la citología, se debe tener en cuenta el tipo elegido:
Técnica del celo:
• Celo
• Portaobjetos
• Tinción
Impresión directa con portaobjetos:
• Portaobjetos
• Tinción
Técnica con escobillón:
• Escobillón
• Portaobjetos
• Tinciones
Figura 4. Extensión sobre portaobjetos del material recogido con escobillón.
Raspados superficiales y profundos
Los raspados son importantes para detectar la presencia de parásitos, que pueden encontrarse en las capas más superficiales o más profundas de la piel. Se recomienda realizarlos en caso de enfermedades que cursen con descamación y prurito cuando se sospeche de la presencia de algún parásito.
Tipos de raspado
La profundidad del raspado varía en función del parásito que busquemos:
- Raspado superficial: para detectar parásitos de los géneros de Cheyletiella, Otodectes spp., Sarcoptes spp. o Notoedres spp.
- Raspado profundo (hasta provocar el sangrado capilar): para evidenciar la presencia de parásitos del género Demodex.
Figura 5. Raspado cutáneo en una zona lesionada.
Técnica
Se debe rasurar el pelo de la zona que se va a raspar. Entonces se coloca una gota de aceite en el porta y desde allí se impregna el borde de la hoja de bisturí que se utilizará para raspar. Es necesario pellizcar la zona rasurada y raspar el pliegue (figura 5).
El material recogido con la hoja de bisturí se coloca en el portaobjetos, y se homogeniza con el aceite. A continuación se tapa con el cubreobjetos para impedir que el material se seque, y se observa al microscopio.
Material necesario
Para realizar un raspado necesitaremos:
- Hoja de bisturí
- Aceite mineral
- Portaobjetos
- Cubreobjetos
Tricograma
El tricograma, o análisis del pelo, resulta de utilidad en aquellos pacientes que presenten alopecia y cuando se sospecha de dermatofitosis. Permite valorar la fase de crecimiento en la que se encuentran los pelos, o bien si están rotos debido al prurito. Esta técnica es especialmente útil en gatos que presenten alopecia, en los que es difícil saber si ésta es debida a la caída espontánea del pelo, o bien es autoinducida por el lamido.
Figura 6. Imagen de un
tricograma al microscopio.
Con la ayuda de las pinzas se deben arrancar pelos de la zona de piel afectada (si se trata de una lesión circular, es mejor recoger los pelos de los bordes de la lesión) y depositarlos en un portaobjetos. Se observan al microscopio con baja intensidad lumínica para valorar la estructura del pelo (figura 6).
Cultivo de hongos
El cultivo de hongos debe realizarse en los casos en los que exista una sospecha de dermatofitosis y en pacientes que presenten un cuadro con alopecia, pápulas, pústulas y/o costras.
Para realizarlo se debe desinfectar la zona con alcohol 70 % y esperar unos minutos. Con la ayuda de las pinzas, se recogen pelos y descamaciones de la periferia de la lesión, que se deben depositar en un contenedor estéril para el envío al laboratorio.
Cultivo microbiológico
Los cultivos bacterianos a partir de lesiones cutáneas están indicados en los pacientes que sufren infecciones recidivantes y en los casos donde en la citología cutánea se visualizan bacilos gramnegativos. En caso de otitis, los cultivos microbiológicos deberían realizarse siempre, para evitar recidivas y cronificación.
Se debe realizar en las lesiones lo más intactas posible, y no desinfectar nunca la superficie de la piel. En función de la lesión presente, se utilizará una u otra técnica:
- Pústulas y pápulas: se debe romper la superficie con la ayuda de una aguja estéril y recoger el material que sale con el hisopo para cultivo.
- Collaretes epidérmicos: se pasa el escobillón 3-4 veces por la lesión, y se introduce en el medio de cultivo.
- Fístula: se introduce al máximo el escobillón en la lesión, evitando tocar la superficie.
Tras recoger la muestra, se introduce el escobillón en el medio de cultivo estéril. Es importante que el transporte de la muestra al laboratorio dure menos de 24 horas.
Antes de obtener la muestra, se recomienda suspender durante una semana la administración de cualquier tipo de antibiótico. Junto con cualquier muestra enviada para realizar un cultivo, se aconseja adjuntar siempre una citología de la lesión.
Extraído de Pilar Brazis y Glòria Pol, Guía de recogida de muestras en dermatología, Ateuves nº8, pag. 24-28. Contacto con las autoras: UNIVET Servicio de Diagnóstico Veterinario. Edificio M. Medicina. Parque Científico Universitat Autònoma de Barcelona. [email protected] – www.univet.es
